Способ морфологической диагностики алюминоза (бокситового пневмокониоза) легкого с помощью поляризац

Способ морфологической диагностики алюминоза (бокситового пневмокониоза) легкого с помощью поляризац

Поляризационная микроскопия.

Метод исследования в поляризованных лучах применяется для так называемых оптически анизотропных объектов, обладающих двойным лучепреломлением или отражением. Такими объектами являются многие минералы, угли, некоторые растительные ткани и клетки, искусственные и естественные волокна. Оптические свойства анизотропных микрообъектов проявляются по-разному в зависимости от ориентации этих объектов относительно направления наблюдения и плоскости поляризации света, падающего на них. Большинство текстильных волокон также обладает оптически анизотропной структурой, что позволяет использовать при их исследовании метод поляризационной микроскопии.

Наблюдение при поляризационной микроскопии можно проводить как в проходящем, так и в отраженном свете.

В микроскопии с целью получения поляризованного света используют поляризационные фильтры, состоящие из анизотропных кристаллических веществ или плоскопараллельных стеклянных пластинок. Свет, пройдя через них, распадается на два луча с перпендикулярными плоскостями колебаний, т. е. поляризуется. В поперечной механической волне колебания частиц вещества могут происходить в любых направлениях, лежащих в плоскости, перпендикулярной направлению распространения волны. Если при этом направления колебания частиц беспорядочно меняются, но амплитуды их во всех направлениях одинаковы, волна называется естественной, или неполя- ризованной (а). Если колебания происходят только в постоянном направлении, волна называется плоскополяризованной (б), если в различных направлениях, но в некоторых направлениях амплитуды

Рис. 5.8. Виды поляризации волн света: а — естественная или неполяризо- ванная; б — плоскополяризованная; в — частично поляризованная

больше, чем в других, волна называется частично поляризованной (в). Один из лучей (обыкновенный), подчиняясь закону преломления спета, претерпевает полное внутреннее отражение, второй (его принято называть необыкновенным) проходит через фильтр и за счет некоторого отставания параллельно смешается (рис. 5.8).

Выходящий из поляризатора свет имеет строго определенное направление колебания волн, называемое плоскостью поляризации. Если на пути такого света поместить второй поляризатор (в поляризационном микроскопе он называется анализатором), плоскость поляризации которого будет перпендикулярна к плоскости первого, то свет поглотится.

При исследовании анизотропных препаратов к обычной схеме микроскопа перед осветительной системой добавляют поляризатор, а после объектива — анализатор, находящиеся в скрещенном либо параллельном положении относительно друг друга. Свет, излучаемый осветителем, пропускают через поляризатор. Сообщенная ему при этом поляризация меняется при последующем прохождении света через материал (или отражении от него). Эти изменения изучаются с помощью анализатора и различных оптических компенсаторов. Анализируя такие изменения, можно судить об основных оптических характеристиках анизотропных микрообъектов: силе двойного лучепреломления, количестве оптических осей и их ориентации, вращении плоскости поляризации, дихроизме.

При скрещенных поляризаторе и анализаторе в темном поле зрения микроскопа видны темные, светлые или окрашенные анизотропные элементы объекта. Вид этих элементов зависит от положения объекта относительно плоскости поляризации и от величины двойного лучепреломления. Более точное определение оптических данных объекта делается с помощью различных компенсаторов (неподвижных кристаллических пластинок, подвижных клиньев и пластинок).

Различают два метода работы с помощью поляризационного микроскопа: коноскопический и ортоскопический.

Первый используется при кристаллоскопических исследованиях. Второй — ортоскопический метод — основан на исследовании микрообъектов, в том числе волокон, при освещении с малой осветительной апертурой, когда все участки наблюдаемого микрообъекта практически освещаются перпендикулярно падающим светом.

Люминесцентная микроскопия. Люминесцентная микроскопия основана на изучении структур микрообъектов, выявляемых по свечению, возбуждаемому коротковолновыми лучами спектра.

В микроскопии люминесценцию обычно вызывают лучами спектральной области с длиной волны от 300 до 1000 нм, при этом область исследуемой люминесценции находится в пределах от 400 до 700 нм.

Различают первичную и вторичную люминесценцию. Первичная, или собственная, люминесценция обусловлена способностью объекта флюоресцировать. Вторичная люминесценция возникает после обработки объекта флуорохромными веществами.

Исследование может осуществляться в проходящем и падающем свете по методам темного и светлого полей, но при освещении микрообъектов по методу светлого поля наблюдаемое свечение более интенсивно, поэтому для исследования слабо люминесцирующих объектов предпочтительнее этот метод.

Схема люминесцентного микроскопа отличается от схемы обычного микроскопа наличием двух светофильтров: в осветительной системе и после объектива. Первый выделяет возбуждающее излучение, а второй пропускает только свет флуоресценции. Важное значение в люминесцентной микроскопии имеет правильный подбор по спектральным характеристикам комбинации осветителя и светофильтров. Особое внимание при изучении первичной люминесценции следует обратить на то, чтобы запирающие светофильтры не только полностью поглощали возбуждающий свет, но и пропускали без ослабления все возможные виды волн люминесценции.

В случае исследования вторичной люминесценции объектов, предварительно обработанных флуорохромами, иногда возникает задача наблюдения свечения определенной длины волны. Тогда используются запирающие светофильтры, пропускающие волны узких зон спектра.

Немецкий ученый Штефан Хелль в сотрудничестве с аргентинским ученым Мариано Босси из Института биофизической химии в 2006 г. разработали микроскоп под названием флуоресцентный наноскоп с разрешением в 1 — 10 нм, который позволяет получать высококачественные трехмерные 3D-изображения. Ими впервые применен принцип комбинированной микроскопии, когда опорное освещение по принципу лазерной рентгеноскопии позволяет получить оптическое изображение с выходными длинами волн оптического микроскопа, но обеспечивает разрешение микроскопии в диапазоне 1—10 нм.

Ультрафиолетовая, инфракрасная и рентгеновская микроскопия позволяют проводить исследования за пределами видимой области спектра. Для визуализации изображения используются электроннооптические преобразователи, телевизионные системы, фотографические устройства и др.

Ультрафиолетовая микроскопия (250—400 нм) применяется главным образом при исследовании неокрашенных биологических клеток и тканей, которые обладают избирательным поглощением в УФ-об- ласти.

Инфракрасная микроскопия осуществляется на специальных инфракрасных микроскопах, снабженных электронно-оптическими преобразователями. Этот метод позволяет исследовать непрозрачные для видимого света и УФ-излучения объекты, поскольку их структуры могут хорошо поглощать свет с длиной волны 750—1200 нм. Для инфракрасной микроскопии не нужна предварительная химическая обработка препаратов. Фотофиксация инфракрасного изображения не требует специальных приборов или осветителей. На обычном световом микроскопе с лампой накаливания в качестве источника света можно фотографировать микроскопическое изображение в инфракрасных лучах, если применять фотопластинки, чувствительные в инфракрасной области 0,8—1,5 мкм.

Читайте также:  Применение ингибиторов протонной помпы связано с более низким риском развития когнитивных нарушений

Инфракрасная микроскопия (0,75—1,2 мкм) позволяет изучать внутреннюю структуру некоторых видов стекол, кристаллов, минералов.

Рентгеновская микроскопия представляет собой совокупность методов исследования микроскопического строения объектов с помощью рентгеновского излучения. Предел разрешения рентгеновских

Рис. 5.9. Схема рентгеновской трубки

микроскопов может быть на два-три порядка выше, чем световых, поскольку длина волны рентгеновского излучения на два-три порядка меньше длины волны видимого света.

Наибольшее распространение получила проекционная рентгеновская микроскопия, которая основана на принципе теневой проекции объекта в расходящемся пучке рентгеновских лучей, испускаемых «точечным» источником (рис. 5.9). Проекционные рентгеновские микроскопы состоят из сверхмикрофокусного источника рентгеновских лучей с фокусом 0,1—1 мкм в диаметре. Следовательно, объект должен находиться на малых расстояниях от источника рентгеновского излучения. Для этого фокус трубки располагается непосредственно на окне рентгеновской трубки либо на вершине иглы анода, помещенной вблизи окна трубки. Простейшая трубка состоит из запаянного стеклянного или керамического баллона (корпуса рентгеновской трубки), внтури которого создается разряжение 10 _6 —5 х 10 -7 мм рт. ст. Линейное разрешение проекционных рентгеновских микроскопов достигает 0,1—0,5 мкм. Контраст в изображении возникает благодаря различному поглощению рентгеновского излучения в областях объекта с разной плотностью или составом; чувствительность метода проекционной рентгеновской микроскопии определяется отличием коэффициентов поглощения рентгеновского излучения различными участками исследуемого объекта. Проекционная рентгеновская микроскопия находит широкое применение в исследованиях микроскопического строения различных объектов в медицине, минералогии, металловедении и других областях. С помощью рентгеновского микроскопа можно оценивать качество окраски или тонких покрытий, оклейки или отделки миниатюрных изделий. Этот метод позволяет получать микрорентгенографии биологических и ботанических срезов толщиной до 200 мкм.

Его используют также для анализа смеси порошков легких и тяжелых металлов, при изучении внутреннего строения объектов, непрозрачных для световых лучей и не пропускающих электроны. Исследуемые образцы при этом не надо помещать в вакуум, как в электронном микроскопе, они не подвергаются разрушающему действию электронов.

7. Понятие о поляризационной микроскопии

Рассматривая прозрачные биологические объекты в световом микроскопе, трудно выявить некоторые структуры, поэтому приходится применять некоторые специальные методики, в частности – поляризационную микроскопию.

Поляризационный микроскоп аналогичен обычному биологическому микроскопу, но перед конденсором имеется поляризатор, а в тубусе между объективом и окуляром расположен анализатор. Предметный столик может вращаться вокруг своей оси.

Если скрестить поляризатор и анализатор, то поле зрения будет темным. Таким же оно останется после помещения на предметный столик изотропных прозрачных тел. Анизотропные предметы изменяют поле зрения в соответствии с тем влиянием, которое они оказывают на направление плоскости колебаний поляризованного света.

Так как некоторые ткани (мышечная, костная, нервная) обладают анизотропией, то возможна поляризационная микроскопия биологических объектов. При скрещенных поляризаторе и анализаторе будут видны только те структуры, анизотропия которых изменяет поляризованный свет.

Поляризованный свет можно использовать в модельных условиях для оценки механических напряжений, возникающих в костной такни. Этот метод основан на явлении фотоупругости, которое заключается в возникновении оптической анизотропии в первоначально изотропных твердых телах под влиянием механических нагрузок.

Из прозрачного изотропного материала, например – плексигласа, создают плоскую модель кости. В скрещенных поляроидах эта модель выглядит темной. Прикладывая нагрузку, вызывают анизотропию плексигласа, что становится заметным по характерной картине полос и пятен. По этой картине, а также по ее изменению при увеличении или уменьшении нагрузок можно судить о механических напряжениях, возникающих в модели, а следовательно, и в натуре.

Выводы и заключение

Сегодня мы познакомились с такими важными явлениями волновой оптики, как интерференция и поляризация света. Вы видите, что эти явления достаточно широко используются в технике и медицине. На следующей лекции мы познакомимся со следующим важным явлением волновой оптики – с дифракцией света и узнаем много нового о таком хорошо известном вам приборе как световой микроскоп.

Реферат: Световая микроскопия

Световая микроскопия обеспечивает увеличение до 2-3 тысяч раз, цветное и подвижное изображение живого объекта, возможность микрокиносъемки и длительного наблюдения одного и того же объекта, оценку его динамики и химизма.

Основными характеристиками любого микроскопа являются разрешающая способность и контраст. Разрешающая способность — это минимальное расстояние, на котором находятся две точки, демонстрируемые микроскопом раздельно. Разрешение человеческого глаза в режиме наилучшего видения равно 0.2 мм.

Контраст изображения — это различие яркостей изображения и фона. Если это различие составляет менее 3 — 4 %, то его невозможно уловить ни глазом, ни фотопластинкой; тогда изображение останется невидимым, даже если микроскоп разрешает его детали. На контраст влияют как свойства объекта, которые изменяют световой поток по сравнению с фоном, так и способности оптики уловить возникающие различия в свойствах луча.

Возможности светового микроскопа ограничены волновой природой света. Физические свойства света — цвет (длина волны), яркость (амплитуда волны), фаза, плотность и направление распространения волны изменяются в зависимости от свойств объекта. Эти различия и используются в современных микроскопах для создания контраста.

Увеличение микроскопа определяется как произведение увеличения объектива на увеличение окуляра. У типичных исследовательских микроскопов увеличение окуляра равно 10, а увеличение объективов – 10, 45 и 100. Соответственно, увеличение такого микроскопа составляет от 100 до 1000. Некоторые из микроскопов имеют увеличение до 2000. Еще более высокое увеличение не имеет смысла, так как при этом разрешающая способность не улучшается. Напротив, качество изображения ухудшается.

Числовая апертура используется для выражения разрешающей способности оптической системы или светосилы объектива. Светосила объектива -интенсивность света, приходящаяся на единицу площади изображения, приблизительно равна квадрату NA. Величина NA составляет примерно 0,95 для хорошего объектива. Микроскоп обычно рассчитывают таким образом, чтобы его полное увеличение составляло около 1000 NA. Если между объективом и образцом ввести жидкость (масло или, что бывает реже, дистиллированную воду), то получится «иммерсионный» объектив с величиной NA, достигающей 1,4, и с соответствующим улучшением разрешения.

Читайте также:  Полидактилия у детейВаш ребенок

Методы световой микроскопии

Методы световой микроскопии (освещения и наблюдения). Методы микроскопии выбираются (и обеспечиваются конструктивно) в зависимости от характера и свойств изучаемых объектов, так как последние, как отмечалось выше, влияют на контрастность изображения.

Метод светлого поля и его разновидности

Метод светлого поля в проходящем свете применяется при изучении прозрачных препаратов с включенными в них абсорбирующими (поглощающими свет) частицами и деталями. Это могут быть, например, тонкие окрашенные срезы животных и растительных тканей, тонкие шлифы минералов и т. д. В отсутствие препарата пучок света из конденсора, проходя через объектив, даёт вблизи фокальной плоскости окуляра равномерно освещенное поле. При наличии в препарате абсорбирующего элемента происходит частичное поглощение и частичное рассеивание падающего на него света, что и обусловливает появление изображения. Возможно применение метода и при наблюдении неабсорбирующих объектов, но лишь в том случае, если они рассеивают освещающий пучок настолько сильно, что значительная часть его не попадает в объектив.

Метод косого освещения — разновидность предыдущего метода. Отличие между ними состоит в том, что свет на объект направляют под большим углом к направлению наблюдения. Иногда это помогает выявить «рельефность» объекта за счёт образования теней.

Метод светлого поля в отражённом свете применяется при исследовании непрозрачных отражающих свет объектов, например шлифов металлов или руд. Освещение препарата (от осветителя и полупрозрачного зеркала) производится сверху, через объектив, который одновременно играет и роль конденсора. В изображении, создаваемом в плоскости объективом совместно с тубусной линзой, структура препарата видна из-за различия в отражающей способности её элементов; на светлом поле выделяются также неоднородности, рассеивающие падающий на них свет.

Метод темного поля и его разновидности

Метод тёмного поля в проходящем свете ( Dark-field microscopy) используется для получения изображений прозрачных неабсорбирующих объектов, которые не могут быть видны, если применить метод светлого поля. Зачастую это биологические объекты. Свет от осветителя и зеркала направляется на препарат конденсором специальной конструкции — т. н. конденсором тёмного поля. По выходе из конденсора основная часть лучей света, не изменившая своего направления при прохождении через прозрачный препарат, образует пучок в виде полого конуса и не попадает в объектив (который находится внутри этого конуса). Изображение в микроскопе формируется при помощи лишь небольшой части лучей, рассеянных микрочастицами находящегося на предметном стекле препарата внутрь конуса и прошедшими через объектив. Темнопольная микроскопия основана на эффекте Тиндаля (Tyndall effect) , известным примером которого служит обнаружение пылинок в воздухе при освещении их узким лучом солнечного света. В поле зрения на тёмном фоне видны светлые изображения элементов структуры препарата, отличающихся от окружающей среды показателем преломления. У крупных частиц видны только светлые края, рассеивающие лучи света. Используя этот метод, нельзя определить по виду изображения, прозрачны частицы или непрозрачны, больший или меньший показатель преломления они имеют по сравнению с окружающей средой.

Проведение темнопольного исследования

Предметные стекла должны быть не толще 1,1-1,2 мм, покровные 0,17 мм, без царапин и загрязнений. При приготовлении препарата следует избегать наличия пузырьков и крупных частиц (эти дефекты будут видны ярко святящимися и не позволят наблюдать препарат). Для темнопольной применяют более мощные осветители и максимальный накал лампы.

Настройка темнопольного освещения в основном заключается в следующем:

Устанавливают свет по Келеру;

Заменяют светлопольный конденсор темнопольным;

На верхнюю линзу конденсора наносят иммерсионное масло или дистиллированную воду;

Поднимают конденсор до соприкосновения с нижней поверхностью предметного стекла;

Объектив малого увеличения фокусируют на препарат;

С помощью центрировочных винтов переводят в центр поля зрения светлое пятно (иногда имеющее затемненный центральный участок);

Поднимая и опуская конденсор, добиваются исчезновения затемненного центрального участка и получения равномерно освещенного светлого пятна.

Если этого сделать не удается, то надо проверить толщину предметного стекла (обычно такое явление наблюдается при использовании слишком толстых предметных стекол — конус света фокусируется в толще стекла).

После правильной настройки света устанавливают объектив нужного увеличения и исследуют препарат.

В основе метода ультрамикроскопии лежит тот же принцип – препараты в ультрамикроскопах освещаются перпендикулярно направлению наблюдения. При этом методе можно обнаружить (но не «наблюдать» в буквальном смысле слова) чрезвычайно мелкие частицы, размеры которых лежат далеко за пределами разрешающей способности наиболее сильных микроскопов. При помощи иммерсионных ультрамикроскопов удаётся зарегистрировать присутствие в препарате частиц с×частиц размером до 2×10 в -9 степени м. Но форму и точные размеры таких помощью этого метода определить невозможно. Их изображения представляются наблюдателю в виде дифракционных пятен, размеры которых зависят не от размеров и формы самих частиц, а от апертуры объектива и увеличения микроскопа. Так как подобные частицы рассеивают очень мало света, то для их освещения требуются чрезвычайно сильные источники света, например угольная электрическая дуга. Ультрамикроскопы применяются в основном в коллоидной химии.

Метод фазового контраста

Метод фазового контрастаи его разновидность — т. н. метод «аноптрального» контраста предназначены для получения изображений прозрачных и бесцветных объектов, невидимых при наблюдении по методу светлого поля. К таковым относятся, например, живые неокрашенные животные ткани. Суть метода в том, что даже при очень малых различиях в показателях преломления разных элементов препарата световая волна, проходящая через них, претерпевает разные изменения по фазе (приобретает т. н. фазовый рельеф). Не воспринимаемые непосредственно ни глазом, ни фотопластинкой, эти фазовые изменения с помощью специального оптического устройства преобразуются в изменения амплитуды световой волны, т. е. в изменения яркости («амплитудный рельеф»), которые уже различимы глазом или фиксируются на фоточувствительном слое. Иными словами, в получаемом видимом изображении распределение яркостей (амплитуд) воспроизводит фазовый рельеф. Получаемое таким образом изображение называется фазово-контрастным.

Читайте также:  Васкулит кожный симптомы дермального ангиита, причины полиморфной формы и существующие методы лечени

Фазово-контрастное устройство может быть установлено на любом световом микроскопе и состоит из:

Набора объективов со специальными фазовым пластинками;

Конденсора с поворачивающимся диском. В нем установлены кольцевые диафрагмы, соответствующие фазовым пластинкам в каждом из объективов;

Вспомогательного телескопа для настройки фазового контраста.

Настройка фазового контраста заключается в следующем:

Заменяют объективы и конденсор микроскопа на фазовые (обозначенные буквами Ph) ;

Устанавливают объектив малого увеличения. Отверстие в диске конденсора должно быть без кольцевой диафрагмы (обозначенной цифрой «0»);

Настраивают свет по Келеру;

Выбирают фазовый объектив соответствующего увеличения и фокусируют его на препарат;

Поворачивают диск конденсора и устанавливают соответствующую объективу кольцевую диафрагму;

Вынимают из тубуса окуляр и вставляют на его место вспомогательный телескоп. Настраивают его так, чтобы были резко видны фазовая пластинка (в виде темного кольца) и кольцевая диафрагма (в виде светлого кольца того же диаметра). С помощью регулировочных винтов на конденсоре совмещают эти кольца. Вынимают вспомогательный телескоп и вновь устанавливают окуляр.

Благодаря применению этого способа микроскопии контраст живых неокрашенных микроорганизмов резко увеличивается и они выглядят темными на светлом фоне (позитивный фазовый контраст) или светлыми на темном фоне (негативный фазовый контраст).

Фазово-контрастная микроскопия применяется также для изучения клеток культуры ткани, наблюдения действия различных вирусов на клетки и т. п. В этих случаях часто применяют биологические микроскопы с обратным расположением оптики — инвертированные микроскопы. У таких микроскопов объективы расположены снизу, а конденсор — сверху.

Поляризационная микроскопия – это метод наблюдения в поляризованном свете для микроскопического исследования препаратов, включающих оптически анизотропные элементы (или целиком состоящих из таких элементов). Таковыми являются многие минералы, зёрна в шлифах сплавов, некоторые животные и растительные ткани и пр. Оптические свойства анизотропных микрообъектов различны в различных направлениях и проявляются по-разному в зависимости от ориентации этих объектов относительно направления наблюдения и плоскости поляризации света, падающего на них. Наблюдение можно проводить как в проходящем, так и в отражённом свете. Свет, излучаемый осветителем, пропускают через поляризатор. Сообщенная ему при этом поляризация меняется при последующем прохождении света через препарат (или отражении от него). Эти изменения изучаются с помощью анализатора и различных оптических компенсаторов. Анализируя такие изменения, можно судить об основных оптических характеристиках анизотропных микрообъектов: силе двойного лучепреломления, количестве оптических осей и их ориентации, вращении плоскости поляризации, дихроизме.

Метод интерференционного контраста

Метод интерференционного контраста (интерференционная микроскопия) состоит в том, что каждый луч раздваивается, входя в микроскоп. Один из полученных лучей направляется сквозь наблюдаемую частицу, другой — мимо неё по той же или дополнительной оптической ветви микроскопа. В окулярной части микроскопа оба луча вновь соединяются и интерферируют между собой. Один из лучей, проходя через объект, запаздывает по фазе (приобретает разность хода по сравнению со вторым лучом). Величина этого запаздывания измеряется компенсатором. Можно сказать, что метод интерференционного контраста сходен с методом фазового контраста — они оба основаны на интерференции лучей, прошедших через микрочастицу и миновавших её. Как и фазово-контрастная микроскопия, этот метод дает возможность наблюдать прозрачные и бесцветные объекты, но их изображения могут быть и разноцветными (интерференционные цвета). Оба метода пригодны для изучения живых тканей и клеток и применяются во многих случаях именно с этой целью. Главное отличие интерференционной микроскопии от метода фазового контраста – это возможность измерять разности хода, вносимые микрообъектами. Метод интерференционного контраста часто применяют совместно с другими методами микроскопии, в частности с наблюдением в поляризованном свете. Его применение в сочетании с микроскопией в ультрафиолетовых лучах позволяет, к примеру, определить содержание нуклеиновых кислот в общей сухой массе объекта. К интерференционной микроскопии относятся также методы использования микроинтерферометров.

Метод исследования в свете люминесценции

Метод исследования в свете люминесценции (люминесцентная микроскопия, или флуоресцентная микроскопия) состоит в наблюдении под микроскопом зелено-оранжевого свечения микрообъектов, которое возникает при их освещении сине-фиолетовым светом или не видимыми глазом ультрафиолетовыми лучами. В оптическую схему микроскопа вводятся два светофильтра. Один из них помещают перед конденсором. Он пропускает от источника-осветителя излучение только тех длин волн, которые возбуждают люминесценцию либо самого объекта (собственная люминесценция), либо специальных красителей, введённых в препарат и поглощённых его частицами (вторичная люминесценция). Второй светофильтр, который установлен после объектива, пропускает к глазу наблюдателя (или на фоточувствительный слой) только свет люминесценции. В люминесцентной микроскопии используют освещение препаратов как сверху (через объектив, который в этом случае служит и конденсором), так и снизу, через обычный конденсор. Наблюдение при освещении сверху иногда называют «люминесцентной микроскопией в отражённом свете» (этот термин условен — возбуждение свечения препарата не является простым отражением света). Его часто используют совместно с наблюдением по фазово-контрастному методу в проходящем свете. Метод нашел широкое применение в микробиологии, вирусологии, гистологии, цитологии, в пищевой промышленности, при исследовании почв, в микрохимическом анализе, в дефектоскопии. Такое многообразие применений объясняется очень высокой цветовой чувствительностью глаза и высокой контрастностью изображения самосветящегося объекта на тёмном нелюминесцирующем фоне. Кроме того, информация о составе и свойствах исследуемых веществ, которую можно получить, зная интенсивность и спектральный состав их люминесцентного излучения, имеет огромную ценность.

Ссылка на основную публикацию
Спорт при плоскостопии бег, танцы, футбол и другие виды
Можно ли при плоскостопии заниматься спортом? Физические нагрузки разрешены, но человеку с данным заболеванием подходит не каждый вид тренировок. Полностью...
Спайки после операции симптомы, признаки, лечение и профилактика заболевания
Спайки в малом тазу: причины и симптомы Спайки в полости малого таза — наиболее актуальная проблема, так как они могут...
Спаси жизнь — стань донором костного мозга!
Сколько стоит сдать костный мозг на донорство? Стоимость сдачи костного мозга на донорство в пределах Российской Федерации варьируется от 545...
Спортивное сердце преимущество или болезнь – блог
4 вида спорта, которые делают жизнь длиннее Вы уже, наверное, не раз слышали, что различные спортивные упражнения могут помочь в...
Adblock detector